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Mit der Übernahme der AC Biotec GmbH durch die Direvo AG haben wir unser Hardwaregeschäft eingestellt. In Zukunft werden wir uns ganz auf unser Dienstleistungsport-folio konzentrieren. Selbstverständlich stehen wir unseren Kunden weiterhin als Ansprechpartner zur Verfügung.

Bei Interesse wenden Sie sich bitte direkt an unseren langjährigen Partner Kühner in der Schweiz.

Email: tanderlei@kuhner.com

Allgemein

 
 

RAMOS bestimmt online die Atmungsaktivität Sauerstofftransferrate (OTR), Kohlendioxidtransferrate (CTR), Respirationsquotienten (RQ)) mikrobieller, pflanzlicher oder tierischer Zellkulturen. Die Atmungsaktivität (OTR,CTR) ist die geeigneteste Messgröße um den physiologischen Zustand von Kulturen zu quantifizieren und stellt somit eine wichtige Informationsquelle für den Anwender dar (siehe Beispiele).

Der Gründer der AC Biotec, Tibor Anderlei, ist Miterfinder der RAMOS-Technologie. Die langjährige Anwendungserfahrung von RAMOS hat eine einmalige Expertise auf dem Gebiet der Schüttelkolben generiert, die wir Ihnen gerne zur Verfügung stellen.

AC Biotec bietet Ihnen sowohl Dienstleitungen mit der RAMOS-Technologie an, als auch den Vertrieb. Weiterhin stellen wir auf Kundenwunsch auch eine Mietanlage zur Verfügung.

Für weitere Fragen kontaktieren Sie uns bitte e-mail

Ihre Vorteile:

 
 
  • Ersetzt teure Fermentationen in gerührten Bioreaktoren
  • Optimiert Screening-Bedingungen in geschüttelten Bioreaktoren
  • Quasi-non-Stop Betrieb durch extrem kurze Rüstzeit
  • Generiert mehr Informationen über Ihre Kultur in geschüttelten Bioreaktoren
  • Verkürzt die Medienoptimierungszeit
  • Erleichtert das Scale-Up/Down von Bioprozessen durch die Ermittlung wertvoller Prozessgrössen (OTR, CTR, RQ, umax,...)
  • Garantiert ein reproduzierbares Inokulum für den gerührten Bioreaktor
  • Kann zur Qualitätssicherung von komplexen Medienbestandteilen im industriellen Betrieb eingesetzt werden
  • Reduziert die Bioprozessoptimierungszeit und die "time to market"
  • Die Ergebnisse aus der RAMOS-Anlage sind auf Ihre Schüttelkolben übertragbar
 
MikrOTR ermöglicht jetzt auch die online Messung der Atmungsaktivität in Mikrotiterplatten.
  Methode/Funktion  
 

Während einer Fermentation wird kontinuierlich ein sich wiederholender Messzyklus durchlaufen, der in eine Mess- und eine Spülphase unterteilt ist.
In der Spülphase sind das Ein- (V1) und das Auslassventil (V2) geöffnet und der Messkolben wird mit Luft durchströmt. Die Filter sorgen für sterile Bedingungen im Kolben. Zu Beginn der Messphase werden das Ein- und das Auslassventil des Messkolbens geschlossen. Die anhaltende Atmungsaktivität der Mikroorganismen führt zur Veränderung des Sauerstoff- und Kohlendioxidpartialdruckes im Gasraum des Messkolbens. Aus den Partialdruckänderungen, die mit Hilfe der Sensoren erfasst werden, bestimmt der angeschlossene Rechner die Sauerstoff- und Kohlendioxidtransferrate, respektive den Respirationsquotient. Anschließend werden die Ventile (V1) und (V2) wieder geöffnet und die nächste Spülphase beginnt. Eine spezielle Kalibriertechnik stellt sehr gut reproduzierbare Messungen sicher.

 

 

 

 

Die Musterverläufe der Sauerstofftransferrate (Fig. 3) zeigen den Einfluss biologischer Phänomene auf die Atmungsaktivität der Mikroorgansimen. Fig. 3.1 stellt den zeitlichen Verlauf der Sauerstofftransferrate bei unlimitierten Wachstum einer mikrobiellen Kultur dar. Am Anfang steigt die Sauerstofftransferrate mit der wachsenden Biomasse exponentiell an, bis sie nach einer gewissen Zeit abknickt und schlagartig abfällt. Dieser steile Abfall zeigt an, dass die Kohlstoffquelle des Mediums verbraucht ist. Diese Kurve in der Fig. 3.1 repräsentiert einen idealen Verlauf der Sauerstofftransferrate (OTR). Jede Abweichung von diesem ideal Verlauf gibt dem Anwender Informationen über seine Kultivierungsbedingungen (Fig. 3.2 - 3.5). Somit können ohne Probennahme Limitierungen (3.2, 3.3), Inhibierungen (3.4) und Diauxien (3.5) sicher und zeitsparend durch RAMOS erkannt werden.

  Beispiele  
 
Die Liste zeigt eine Auswahl von biologischen Systemen, die mit der RAMOS Anlage untersucht wurden:
Rentabilitätsrechnung:
Kultivierung der Hefe Hansenula polymorpha
unter
Sauerstoff- und Substratlimitierung

Gebiet normale
Prozedur
Prozedur mit
RAMOS
Einsparung
Rohmaterialien 2250 mL 290mL 87%
Optimierungszeit 80h 53h 34%
Arbeitszeit 16.5h 4.1h 75%
Veröffentlichungen:
  1. Anderlei T., Büchs J., Device for sterile online measurement of the oxygen transfer rate in shaking flasks, Biochem. Eng. J. 7(2), 157-162, 2001
  2. Stöckmann C., Losen M.; Dahlems U., Gellissen G., Büchs J., Definition of reproducible screening conditions case sample Hansenula polymorphia, Chem.-Ing.-Tech. 74(5), 701, 2002
  3. SilberbachM., MaierB., ZimmermannM., BüchsJ., Glucose oxidation by Gluconobacter oxydans: characterization in shaking flasks, scale-up and optimization of the pH profile, Appl. Microbiol. Biotechnol. 62(1), 92-98, 2003
  4. Raval K.N., Hellwig S., Prakash G., Ramos-Plasencia A., Srivastava A., BüchsJ., Necessity of a Two-Stage Process for the Production of Azadirachtin-Related Limonoids in Suspension Cultures of Azadirachta indica, J. Biosc. Bioengng. 96(1), 16-22, 2003
  5. Stöckmann Ch., Losen M., Dahlems U., Knocke Ch., Gellissen G., Büchs J., Effect of oxygen supply on passaging and screening of Hansenula polymorpha strains producing a recombinant protein in test tube cultures, FEMS Yeast Res. 4(2), 195-205, 2003
  6. Stöckmann Ch., Maier U., Anderlei T., Knocke Ch., Gellissen G., Büchs J., The Oxygen Transfer Rate as Key Parameter for the Characterisation of Hansenula polymorpha Screening Cultures, J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 30, 613-622, 2003
  7. Maier U., Losen M., Büchs J., Advances in understanding and modeling the gas-liquid mass transfer in shaking flasks, Biochem. Eng. J. 17(3), 155-168, 2004
  8. Danielson P.D., Büchs J., Stöckmann Ch., Fogleman J.C., Maximizing cell densities in miniprep-scale cultures with H15 medium and improved oxygen, Biochem. Eng. J. 17(3), 175-180, 2004
  9. Anderlei T., Zang W., Büchs J., Online respiration activity measurement (OTR, CTR, RQ) in shake flasks, Biochem. Eng. J. 17(3), 187-194, 2004
  10. Lotter St., Büchs J. Utilization of power input measurements for optimisation of culture conditions in shaking flasks, Biochem. Eng. J. 17(3), 195-204, 2004
  11. Peter C.P., Lotter St., Maier U., Büchs J., Impact of out-of-phase conditions on screening results in shaking flask experiments, Biochem. Eng. J. 17(3), 205-216, 2004
  12. Losen M., Lingen B., Pohl M., BüchsJ., Effect of oxygen-limitation and medium composition on Escherichia coli in small-scale cultures, Biotechnol. Progress. (accepted)

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