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Mit der Übernahme
der AC Biotec GmbH durch die Direvo AG haben wir unser
Hardwaregeschäft eingestellt. In Zukunft werden wir uns ganz
auf unser Dienstleistungsport-folio
konzentrieren. Selbstverständlich stehen wir unseren
Kunden weiterhin als Ansprechpartner zur
Verfügung.
Bei Interesse
wenden Sie sich bitte direkt an unseren langjährigen Partner
Kühner in der
Schweiz.
Email: tanderlei@kuhner.com
Allgemein |
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RAMOS bestimmt online die Atmungsaktivität
Sauerstofftransferrate (OTR), Kohlendioxidtransferrate
(CTR), Respirationsquotienten (RQ)) mikrobieller,
pflanzlicher oder tierischer Zellkulturen. Die
Atmungsaktivität (OTR,CTR) ist die geeigneteste
Messgröße um den physiologischen Zustand von Kulturen zu
quantifizieren und stellt somit eine wichtige
Informationsquelle für den Anwender dar (siehe Beispiele).
Der Gründer der AC Biotec, Tibor Anderlei, ist
Miterfinder der RAMOS-Technologie. Die langjährige
Anwendungserfahrung von RAMOS hat eine einmalige
Expertise auf dem Gebiet der Schüttelkolben generiert,
die wir Ihnen gerne zur Verfügung stellen.
AC Biotec bietet Ihnen sowohl Dienstleitungen mit der
RAMOS-Technologie an, als auch den Vertrieb. Weiterhin
stellen wir auf Kundenwunsch auch eine Mietanlage zur
Verfügung. Für weitere Fragen kontaktieren Sie uns
bitte e-mail |
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Ihre Vorteile: |
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- Ersetzt teure Fermentationen in gerührten
Bioreaktoren
- Optimiert Screening-Bedingungen in geschüttelten
Bioreaktoren
- Quasi-non-Stop Betrieb durch extrem kurze Rüstzeit
- Generiert mehr Informationen über Ihre Kultur in
geschüttelten Bioreaktoren
- Verkürzt die Medienoptimierungszeit
- Erleichtert das Scale-Up/Down von Bioprozessen
durch die Ermittlung wertvoller Prozessgrössen (OTR,
CTR, RQ, umax,...)
- Garantiert ein reproduzierbares Inokulum für den
gerührten Bioreaktor
- Kann zur Qualitätssicherung von komplexen
Medienbestandteilen im industriellen Betrieb
eingesetzt werden
- Reduziert die Bioprozessoptimierungszeit und die
"time to market"
- Die Ergebnisse aus der RAMOS-Anlage sind auf Ihre
Schüttelkolben übertragbar
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MikrOTR
ermöglicht jetzt auch die online Messung der
Atmungsaktivität in Mikrotiterplatten.
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Methode/Funktion |
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Während einer Fermentation wird
kontinuierlich ein sich wiederholender Messzyklus
durchlaufen, der in eine Mess- und eine Spülphase
unterteilt ist. In der Spülphase sind das Ein- (V1)
und das Auslassventil (V2) geöffnet und der Messkolben
wird mit Luft durchströmt. Die Filter sorgen für sterile
Bedingungen im Kolben. Zu Beginn der Messphase werden
das Ein- und das Auslassventil des Messkolbens
geschlossen. Die anhaltende Atmungsaktivität der
Mikroorganismen führt zur Veränderung des Sauerstoff-
und Kohlendioxidpartialdruckes im Gasraum des
Messkolbens. Aus den Partialdruckänderungen, die mit
Hilfe der Sensoren erfasst werden, bestimmt der
angeschlossene Rechner die Sauerstoff- und
Kohlendioxidtransferrate, respektive den
Respirationsquotient. Anschließend werden die Ventile
(V1) und (V2) wieder geöffnet und die nächste Spülphase
beginnt. Eine spezielle Kalibriertechnik stellt sehr gut
reproduzierbare Messungen sicher. |
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Die Musterverläufe der
Sauerstofftransferrate (Fig. 3) zeigen den Einfluss
biologischer Phänomene auf die Atmungsaktivität der
Mikroorgansimen. Fig. 3.1 stellt den zeitlichen
Verlauf der Sauerstofftransferrate bei unlimitierten
Wachstum einer mikrobiellen Kultur dar. Am Anfang steigt
die Sauerstofftransferrate mit der wachsenden Biomasse
exponentiell an, bis sie nach einer gewissen Zeit
abknickt und schlagartig abfällt. Dieser steile Abfall
zeigt an, dass die Kohlstoffquelle des Mediums
verbraucht ist. Diese Kurve in der Fig. 3.1
repräsentiert einen idealen Verlauf der
Sauerstofftransferrate (OTR). Jede Abweichung von diesem
ideal Verlauf gibt dem Anwender Informationen über seine
Kultivierungsbedingungen (Fig. 3.2 - 3.5). Somit können
ohne Probennahme Limitierungen (3.2, 3.3), Inhibierungen
(3.4) und Diauxien (3.5) sicher und zeitsparend durch
RAMOS erkannt
werden. | |
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Beispiele |
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| Die Liste zeigt eine Auswahl von
biologischen Systemen, die mit der RAMOS Anlage
untersucht wurden: |
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| Rentabilitätsrechnung: |
Kultivierung
der Hefe Hansenula polymorpha unter Sauerstoff- und
Substratlimitierung
| Gebiet |
normale Prozedur |
Prozedur mit RAMOS |
Einsparung |
| Rohmaterialien |
2250 mL |
290mL |
87% |
| Optimierungszeit |
80h |
53h |
34% |
| Arbeitszeit |
16.5h |
4.1h |
75% |
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| Veröffentlichungen: |
- Anderlei T., Büchs J., Device for sterile online
measurement of the oxygen transfer rate in shaking
flasks, Biochem. Eng. J. 7(2), 157-162, 2001
- Stöckmann C., Losen M.; Dahlems U., Gellissen G.,
Büchs J., Definition of reproducible screening
conditions case sample Hansenula polymorphia,
Chem.-Ing.-Tech. 74(5), 701, 2002
- SilberbachM., MaierB., ZimmermannM., BüchsJ.,
Glucose oxidation by Gluconobacter oxydans:
characterization in shaking flasks, scale-up and
optimization of the pH profile, Appl. Microbiol.
Biotechnol. 62(1), 92-98, 2003
- Raval K.N., Hellwig S., Prakash G.,
Ramos-Plasencia A., Srivastava A., BüchsJ., Necessity
of a Two-Stage Process for the Production of
Azadirachtin-Related Limonoids in Suspension Cultures
of Azadirachta indica, J. Biosc. Bioengng.
96(1), 16-22, 2003
- Stöckmann Ch., Losen M., Dahlems U., Knocke Ch.,
Gellissen G., Büchs J., Effect of oxygen supply on
passaging and screening of Hansenula
polymorpha strains producing a recombinant
protein in test tube cultures, FEMS Yeast Res. 4(2),
195-205, 2003
- Stöckmann Ch., Maier U., Anderlei T., Knocke Ch.,
Gellissen G., Büchs J., The Oxygen Transfer Rate as
Key Parameter for the Characterisation of
Hansenula polymorpha Screening Cultures, J.
Ind. Microbiol. Biotechnol. 30, 613-622, 2003
- Maier U., Losen M., Büchs J., Advances in
understanding and modeling the gas-liquid mass
transfer in shaking flasks, Biochem. Eng. J. 17(3),
155-168, 2004
- Danielson P.D., Büchs J., Stöckmann Ch., Fogleman
J.C., Maximizing cell densities in miniprep-scale
cultures with H15 medium and improved oxygen, Biochem.
Eng. J. 17(3), 175-180, 2004
- Anderlei T., Zang W., Büchs J., Online respiration
activity measurement (OTR, CTR, RQ) in shake flasks,
Biochem. Eng. J. 17(3), 187-194, 2004
- Lotter St., Büchs J. Utilization of power input
measurements for optimisation of culture conditions in
shaking flasks, Biochem. Eng. J. 17(3), 195-204, 2004
- Peter C.P., Lotter St., Maier U., Büchs J., Impact
of out-of-phase conditions on screening results in
shaking flask experiments, Biochem. Eng. J. 17(3),
205-216, 2004
- Losen M., Lingen B., Pohl M., BüchsJ., Effect of
oxygen-limitation and medium composition on
Escherichia coli in small-scale cultures,
Biotechnol. Progress. (accepted)
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